質(zhì)粒DNA的提取與純化
質(zhì)粒是一類雙鏈、閉環(huán)的DNA，大小范圍從1 kb至200 kb以上不等。通常情況下，質(zhì)粒可持續(xù)穩(wěn)定地處于染色體外的游離狀態(tài)，具有自主復(fù)制功能;但在一定條件下也會可逆地整合到宿主染色體上，隨著染色體的復(fù)制而復(fù)制，并通過細(xì)胞分裂傳遞到后代。關(guān)系到下游實驗操作的成敗。提取質(zhì)粒DNA的方法很多，目前應(yīng)用的是堿裂解-中和法，其基本原理為：當(dāng)菌體在NaOH和SDS溶液中裂解時，蛋
質(zhì)粒已成為核酸克隆和測序zui常用的載體。質(zhì)粒DNA提取的產(chǎn)量和純度直接白質(zhì)與DNA發(fā)生變性;當(dāng)加入中和液后，質(zhì)粒DNA分子能夠迅速復(fù)性，呈溶解狀態(tài)，離心時保留在上清液中;蛋白質(zhì)與染色體DNA不能復(fù)性而呈絮狀，離心時可沉淀下來。
質(zhì)粒DNA的純化方法通常是利用了質(zhì)粒DNA相對較小以及共價閉環(huán)這兩個性質(zhì)，例如氯化銫-溴化乙錠梯度平衡離心、離子交換層析、凝膠過濾層析、聚乙二醇分級沉淀等方法。但這些方法相對昂貴或費時。對于小量制備的質(zhì)粒DNA，經(jīng)過苯酚、氯仿抽提，RNA酶消化和乙醇沉淀等簡單步驟即可去除殘余蛋白質(zhì)和RNA，所得純化的質(zhì)粒DNA可滿足酶切、轉(zhuǎn)化、探針標(biāo)記、測序等要求。然而該方法耗時較長，需要接觸苯酚、氯仿等有毒溶劑，而且所提取的質(zhì)粒 DNA有時不能被限制性內(nèi)切酶*消化，因此在追求效率的今天，這種方法已逐漸被質(zhì)量可靠、快捷便利的離心吸附柱純化方法所代替。
線性DNA片段的純化
PCR產(chǎn)物或酶促反應(yīng)的DNA片段中所含的酶、鹽類、殘留引物、dNTP和其他DNA片段有可能影響后續(xù)反應(yīng)的效果，故需經(jīng)過純化處理。 對于電泳檢測觀察到的單一條帶，可以采用乙醇沉淀回收或單純過柱回收方法;對于有非特異性條帶或其他雜帶的DNA片段，則有必要進行膠回收純化。目前商品化的DNA片段回收試劑盒多采用硅膠基質(zhì)材料特異性地吸附DNA，通過高鹽/乙醇洗脫，清除雜質(zhì)。由于各種試劑盒所采用的硅膠基質(zhì)材料不同，DNA片段的回收效率也存在著很大的差異。
基因組DNA的提取、純化
基因組DNA相對穩(wěn)定，故其提取方法也相對簡單。通常細(xì)胞通過表面活性劑處理，釋放出基因組DNA，經(jīng)過蛋白酶和RNA酶消化后，經(jīng)有機溶劑抽提和乙醇沉淀或過柱純化即可獲得一定量的基因組DNA。目前商品化的基因組DNA提取試劑盒分為溶液型和離心吸附柱型兩種。溶液型產(chǎn)品價格經(jīng)濟，產(chǎn)率高，可獲取適用于建立文庫的高分子量DNA，并且可盡可能地回收稀有樣品中的DNA;但操作過程較為繁瑣，對操作者的實驗技能要求較高。離心吸附柱型產(chǎn)品使用方便、快速，提取的DNA 純度較高，但價格昂貴，產(chǎn)量偏低，并且得到的片段多在20 kb左右，不適合建立DNA文庫或用作長片段PCR產(chǎn)物的模板.